一、目的要求
了解过氧化物酶的作用,掌握愈创木酚法测定果蔬组织中过氧化物酶活性的方法。
二、基本原理
过氧化物酶(Peroxidase,POD)是果蔬体内普遍存在的一种重要的氧化还原酶,它与果蔬的许多生理过程和生化代谢过程都有密切关系。在果蔬的生长发育、成熟衰老过程、抗病、抗氧化、抗逆境胁迫中,POD活性不断发生变化。在受到外界刺激、病原菌侵染、贮藏环境变化、加工条件改变等作用时,果蔬组织中POD酶活性都会做出相应得应答反应。
过氧化物酶催化过氧化氢(H2O2)氧化酚类物质产生醌类化合物。这些化合物进一步缩合或与其它分子缩合形成颜色较深的化合物。在过氧化物酶催化作用下,过氧化氢能将愈创木酚(邻甲氧基苯酚)氧化形成4-邻甲氧基苯酚。该产物呈红棕色,在nm处有最大光吸收,故可通比色法测定过氧化物酶的活性。
三、材料、仪器及试剂
(一)材料
各种水果和蔬菜。
(二)仪器及用具
研钵、高速冷冻离心机、分光光度计、秒表、移液器、离心管、试管、容量瓶(mL,0mL)。
(三)试剂
1.mmol/L、pH5.5醋酸缓冲液
母液A(mmol/L醋酸溶液):量取11.55mL冰醋酸,加蒸馏水稀释至0mL。
母液B(mmol/L醋酸钠溶液):称取16.4g无水醋酸钠(或称取27.2g三水合乙酸钠),用蒸馏水溶解、定容至0mL。
取68mL母液A和mL母液B混合后,调节pH至5.5,加蒸馏水稀释至0mL。
2.50mmol/L、pH5.5醋酸缓冲液
3.提取缓冲液(含1mMPEG、4%PVPP和1%TritonX-)
称取mgPEG(聚乙二醇)、4gPVPP(聚乙烯吡咯烷酮,Polyvinyl–polypyrrolidone),取1mLTritonX-,用mmol/L、pH5.5醋酸缓冲液溶解、稀释至mL。
4.25mmol/L愈创木酚溶液
取μL愈创木酚,用50mmol/L、pH5.5醋酸缓冲液稀释至mL。
5.0.5mol/LH2O2
取1.42mL30%H2O2溶液(30%H2O2的摩尔浓度约为17.6mol/L),用50mmol/L、pH5.5醋酸缓冲液稀释至50mL,现用现配,避光保存。
四、实验步骤
(一)酶液制备
称取5.0g果蔬组织样品,置于研钵中,加入5.0mL提取缓冲液,在冰浴条件下研磨成匀浆,于4℃、10×g离心30min,收集上清液即为酶提取液,低温保存备用。
(二)活性测定
取一支试管,加入3.0mL25mmol/L愈创木酚溶液和0.5mL酶提取液,再加入μL0.5mol/LH2O2溶液迅速混合启动反应,同时立即开始计时。将反应混合液倒入比色杯中,置于分光光度计样品室中。以蒸馏水为参比,在反应15s时开始记录反应体系在波长nm处吸光度值作为初始值,然后每隔1min记录一次,连续测定,至少获取6个点的数据。重复三次。
五、实验结果与计算
1.将测定的数据填入下表
2.计算结果
记录反应体系在nm处的吸光度值,制作OD值随时间变化曲线,根据曲线的初始线性部分计算每分钟吸光度变化值△OD。然后,以每克鲜重(FW)果蔬样品每分钟吸光度变化值增加1时为1个过氧化物酶活性单位(U),则U=△OD·min-1·g-1FW。计算公式:
式中:
△OD——反应混合液的吸光度变化值;
△t——酶促反应时间,min;
V——样品提取液总体积,mL;
Vs——测定时所取样品提取液体积,mL;
W——样品重量,g。
过氧化物酶活性还可以每分钟反应体系在波长nm处吸光度值读数变化增加1时所需的酶量为1个活性单位(U),表示为U=△OD·min-1·mg-1蛋白质。酶提取液中蛋白质含量可利用考马斯亮蓝染色法进行测定。即:
其中,C表示酶提取液中蛋白质含量(mg/mL)。这里所计算的实际上是酶的比活力,有利于减少操作过程带来的误差。
六、注意事项
1.应进行预实验。测定每一分钟反应体系的吸光度值的变化,确定该酶促反应速度呈线性变化(初级反应)的时间段。这样,只测定某一段时间内反应液的初始吸光度值(OD0)和最终值(ODt)这两个数据,就可以计算每分钟吸光度值的变化量。
2.利用mmol/L、pH6.0磷酸缓冲液作为提取液,可以提取多数果蔬组织中过氧化物酶。配制方法:
母液A:0.2mol/LNa2HPO4溶液(53.65gNa2HPO4?7H2O或71.64gNa2HPO4?12H2O配成0mL)。
母液B:0.2mol/LNaH2PO4溶液(27.6gNaH2PO4?H2O或31.2gNaH2PO4?2H2O配成0mL)。
分别取12.3mL母液A与87.7mL母液B充分混匀,调节pH值,稀释至mL。样品提取液中的其它成分根据需要加入。
3.在提取缓冲液中加入PEG,PVPP和TritonX-等是为了提高酶蛋白的溶解性,减少提取过程中酶活性的损失。这些物质的具体作用可以参阅本书第一篇相关内容。
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